"Стерилизация"
методическая разработка занятия
Автор: Якименко Татьяна Валерьевна, преподаватель профессионального модуля, Волжский филиал ГБПОУ "Волгоградский медицинский колледж", город Волжский, Волгоградская область
В раздел среднее профессиональное образование
ВОЛЖСКИЙ ФИЛИАЛ ГОСУДАРСТВЕННОГО БЮДЖЕТНОГО
ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАТЕЛЬНОГО УЧРЕЖДЕНИЯ
"ВОЛГОГРАДСКИЙ МЕДИЦИНСКИЙ КОЛЛЕДЖ"
МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА
КОМБИНИРОВАННОГО ЗАНЯТИЯ
Тема: Стерилизация
Междисциплинарный курс:
Безопасная среда для участников лечебно-
диагностического процесса
Курс:
Специальность:
Форма обучения:
I, II 31.02.01 Лечебное дело; 34.02.01 Сестринское дело; 31.02.02 Акушерское дело. очная
Количество часов:
2
Разработчик:
Т.В. Якименко, преподаватель высшей квалификационной категории Методическая разработка рассмотрена и одобрена на заседании УМО № 5 протокол № __ , от "___"__________ 2016г. Председатель УМО № __________Л.В. Борисова "___"_____________2016г. Волжский 2016
1. Мотивация изучения темы:
Любые предметы, применяемые при лечении и уходе за пациентами, если они не будут полностью обеззаражены, могут привести к инфицированию других людей. Использование недостаточно простерилизованного инструментария может вызвать развитие парентерального гепатита, СПИДа, стафилококковой и других инфекций. Медицинская сестра должна знать виды, методы и режимы стерилизации. Осуществлять стерилизацию согласно действующим нормативным документам.
Цели занятия:
Для преподавателя:
формирование у студентов общих и профессиональных компетенций; формирование умений и навыков самостоятельного умственного труда; развитие самостоятельности мышления, способности к самоорганизации; развитие творческих способностей, познавательного интереса, повышения активности обучающихся; мотивирование регулярной целенаправленной работы по освоению специальности.
Учебные:
Знать:
Направленность умений и знаний на формирование ПК и ОК
№ п/ п Знания ПК ОК 1 З.1. Понятие «стерилизация»; Виды, методы, средства и режимы стерилизации; ПК 4.7.; ПК 5.7., ПК 7.7. Обеспечивать инфекционную безопасность. ПК 4.8.; ПК 5.8., ПК 7.8. Обеспечивать безопасную больничную среду для пациентов и персонала. ОК 2. Организовывать собственную деятельность, исходя из цели и способов её достижения, определенных руководителем. ОК 3. Анализировать рабочую ситуацию, осуществлять текущий и итоговый контроль, оценку и коррекцию собственной деятельности, нести ответственность за результаты своей работы. ОК 4. Осуществлять поиск информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач. ОК 8. Соблюдать правила охраны труда, пожарной безопасности и техники безопасности. 2 З.2. Виды контроля режима и качества паровой и воздушной стерилизации; ПК 4.7.; ПК 5.7., ПК 7.7. Обеспечивать инфекционную безопасность. ПК 4.8.; ПК 5.8., ПК 7.8. Обеспечивать безопасную больничную среду для ОК 2. Организовывать собственную деятельность, исходя из цели и способов её достижения, определенных руководителем. ОК 3. Анализировать
пациентов и персонала. рабочую ситуацию, осуществлять текущий и итоговый контроль, оценку и коррекцию собственной деятельности, нести ответственность за результаты своей работы. ОК 4. Осуществлять поиск информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач. ОК 8. Соблюдать правила охраны труда, пожарной безопасности и техники безопасности. 3 З.3. Документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации. ПК 4.7.; ПК 5.7., ПК 7.7. Обеспечивать инфекционную безопасность. ПК 4.8.; ПК 5.8., ПК 7.8. Обеспечивать безопасную больничную среду для пациентов и персонала. ОК 2. Организовывать собственную деятельность, исходя из цели и способов её достижения, определенных руководителем. ОК 4. Осуществлять поиск информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач.
Воспитательные:
формирование стремления добиваться высоких результатов в работе; воспитание стремления к рациональному сочетанию труда и отдыха; способствовать формированию интереса к профессиональной деятельности, путем реализации внутри и междисциплинарных связей, мотивации изучения темы для решения дальнейших практических задач;
Развивающие:
развитие привычек учебного труда: готовность к занятию, организованность; способствовать развитию логического и клинического мышления; способствовать развитию умения работать самостоятельно; способствовать актуализации прежних знаний.
Интеграционные связи:
Внутримодудьные:
МДК. 04.01. Безопасная среда для участников лечебно-диагностического процесса. Тема 1.1.Основы организации работы младшей медицинской сестры по уходу за больными. Тема 1.2. Инфекционный контроль и профилактика ВБИ . Тема 1.3. Дезинфекция. Тема 1.4. Предстерилизационная очистка.
Межмодульные,
связь с учебными дисциплинами: Основы микробиологии и иммунологии, гигиена и экология человека. МДК.01.03 Сестринское дело в системе первичной медико-санитарной помощи населению.
Оснащение:
доска, мел, методическая разработка комбинированного занятия, КОСы по теме, дидактический материал .
Основные этапы занятия:
1. организационный момент - 5 минут; 2. проверка теоретических знаний - 25 минут; 3. объяснение нового материала – 45 минут; 4. закрепление нового материала – 5 минут; 5. подведение итогов занятия – 5 минут; 6. задание на дом – 5 минут.
Список литературы:
Основные источники:
1. Кулешова, Л. Основы сестринского дела : теория и практика [Текст]. В 2 ч. Ч. 1 : учебник / Л. И. Кулешова, Е. В. Пустоветова. – Ростов н/Д. : Феникс, 2008. – 477 , [1] с. : ил. – (Медицина). 2. Кулешова, Л. Основы сестринского дела : теория и практика [Текст]. В 2 ч. Ч. 2 : учебник / Л. И. Кулешова, Е. В. Пустоветова. – Ростов н/Д. : Феникс, 2008. – 320 , [2] с. : ил. – (Медицина). 3. Мухина, С. Практическое руководство к предмету «Основы сестринского дела» [Текст] / Светлана Мухина, Изабелла Тарновская. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2013. - 512с. 4. Обуховец, Т.П. Основы сестринского дела Практикум [Текст] / Тамара Обуховец. - Ростов н/д. : Феникс, 2014. - 530 с.(Медицина для Вас). 5. Обуховец, Т.П. Основы сестринского дела [Текст] : учеб. / Т.П. Обуховец, Т.А. Склярова, О.В. Чернова. - Ростов н/д. : Феникс, 2005. - 512с.
Дополнительные источники:
1. Основы сестринского дела : справочник /М.Ю. Алешкина, Н. А. Гуськова, О. П. Иванова, С. В. Науменко, А.М. Спринц, И. Н. Филиппова, Е. П. Шатова, З. М. Юдакова ; под ред. А. М. Спринца. - СПб. : СпецЛит, 2009. - 463 с. 2. Организация сестринской деятельности : учебник / под ред. С. И. Двойникова. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2014. - 528 с. 3. Практическое руководство к предмету "Основы сестринского дела" : учеб. пос. - 2-е изд., испр. и доп. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2014. - 512 с. : ил. 4. Руководство для средних медицинских работиков / Под ред. Ю.П. Никитина, В.М. Чернышева. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 992 c. 5. Щербакова, Т.С. Сестринское дело [Текст]: справочник / Т.С. Щербакова . Ростов н/Д. : Феникс, 2008. – 253
Ход занятия
№ п/п Название этапа Описание этапа Педагогическая цель этапа Время этапа, минуты 1 2 3 4 5 1. Организацион ный момент Отмечается внешний вид студентов и аудитории; проводится инструктаж по охране труда; сообщается тема, цели занятия Создание рабочей атмосферы, формирование профессиональной мотивации к 5
проводится мотивация темы занятия; сообщается и записывается план лекции (Приложение 1). изучению данной темы. 2. Проверка теоретических знаний
а) Проверка знаний
(по предыдущей теме: « Предстерилизационная очистка»)
:
- Задание 1: внести информацию - Задание 2: заполнить таблицу (Приложение 2);
б) проверка аудиторной и
внеаудиторной самостоятельной
работы
: (путем перекрестного рецензирования с последующим анализом самостоятельной работы);
в) подведение итогов контроля
: Преподаватель обращает внимание на допущенные ошибки, вносит коррективы в ответы, отмечает лучших студентов и дает рекомендации, пояснения тем, кто допустил ошибки. Определение уровня усвоения изучаемого материала, выявление слабых мест, устранение ошибок. 25 3. Объяснение нового материала
а) Вступительная часть лекции:
логическая подготовка студентов к восприятию теоретического материала лекции. Формирование познавательного интереса к содержанию учебного материала. 3
б) Основная часть лекции
(преподаватель использует словесный метод)
:
изложение теоретической информации по вопросам лекции: - Виды, методы, средства и режимы стерилизации; - Виды контроля режима и качества паровой и воздушной стерилизации; - Документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации. Изложение и объяснение научной информации, подлежащей осмыслению и запоминанию. Формирование ОК и ПК. 40
в) Заключительная часть
лекции:
логическое обобщение полученной научной информации. Обобщение полученной теоретической информации. 2
4. Закрепление материала По ходу лекции в форме беседы с ответами на вопросы: - Дайте определения понятию: стерилизация ; - Назовите виды стерилизации; - Назовите методы физической стерилизации; - Назовите методы химической стерилизации; - Перечислите виды контроля качества стерилизации; - Перечислите нормативные документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации; Осмысление нового теоретического материала, устранение возникших ошибок при восприятии информации. Определение уровня усвоения изучаемого материала, выявление слабых мест . 5 5. Подведение итогов занятия Преподаватель кратко анализирует занятие и дает критическую оценку каждого его этапа, обращает внимание на хорошие результаты и на допущенные ошибки. Побуждение студентов к рефлексии, стимулирование интереса к учебе и ее результатам. 5 6. Задание на дом - Выучить конспект лекции. (Приложение 1). - Составить графо-логическую структуру «Виды, методы и режимы стерилизации». Активизация самостоятельной работы студентов. Обеспечение добросовестного и осознанного выполнения домашнего задания. 5
Приложение 1
Лекция № 8
Тема: Стерилизация
Стерилизация –
освобождение какого-либо предмета или материала от всех видов микроорганизмов (включая бактерии и их споры, грибы, вирусы и прионы), либо их уничтожение. Любые предметы, применяемые при лечении и уходе за пациентами, если они не будут полностью обеззаражены, могут привести к инфицированию других людей. Использование недостаточно простерилизованного инструментария может вызвать развитие парентерального гепатита, СПИДа, стафилококковой и других инфекций. Стерилизации подвергаются все инструменты, средней и высокой степени риска инфицирования: изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами и медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать её повреждение. Стерилизацию проводят после предстерилизационной очистки с отрицательными результатами проб на следы крови (азопирамовая) и щелочных компонентов синтетических моющих средств (фенолфталеиновая проба).
Виды, методы и режимы стерилизации
(см. таблицу)
Виды
стерилизации
Методы
стерилизации
Действующий агент, режим
Физический паровой воздушный гласперленовый инфракрасный радиационный пар под избыточным давлением (120 °С, давление 1,1 атм. – 45 минут) (132 °С, давление 2,0 атм. – 20 минут) сухой воздух (при 180 °С – 60 минут) (160°С – 150 минут) нагретые стеклянные шарики при 190–240 °С инфракрасное излучение при 200+3 °С облучение ионизирующим излучением Химический жидкостный плазменный газовый растворы химических соединений (альдегид-, кислород- содержащих и др.) пары 20 % пероксида водорода окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.
Паровой метод стерилизации
Для проведения паровой стерилизации используют паровые стерилизаторы (автоклавы). Стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением. Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резин (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс. Режимы стерилизации:
1. 132ºС, 2 атм., 20 минут (основной режим, рекомендуется для изделий из коррозионно-стойкого металла, стекла, изделий из текстиля, резины). 2. 120ºС, 1,1 атм., 45 минут (щадящий режим, рекомендуется для изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов). В целях уменьшения неблагоприятного воздействия пара резиновые перчатки, как и другие изделия из резин, стерилизуют при температуре 120°С.
Виды упаковки и сроки сохранения стерильности:
При стерилизации паровым методом материал упаковывают в стерилизационные коробки с фильтром или без фильтра, двойную мягкую упаковку из бязи, пергамент, крафт-бумагу, бумагу влагопрочную, бумагу высокопрочную, бумагу крепированную. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в стерилизационной коробке без фильтра, в двойной мягкой упаковке, крафт-бумаге – 3 суток, в пергаменте, бумаге влагопрочной, бумаге высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток. В современных упаковках и более 20 суток. При открытой стерилизационной коробке любого образца стерильность материалов, изделий сохраняется до 24 часов.
Сроки использования изделий
контролируются проставляемыми на бирках стерилизационных коробок датами, временем стерилизации, датами и временем вскрытия (первые помечаются работниками ЦСО или автоклавной, вторые выполняются медицинскими сестрами отделений).
Для контроля паровой стерилизации
применяют термовременные ленты фирмы «Винар» – ИС-132, ИС-120. Это современные тесты контроля стерилизации, представляющие собой бумажные полоски с нанесенными на одну сторону специальным индикаторным составом, который меняет цвет при заданном режиме стерилизации (температуре и времени) и подтверждает наличие пара в стерилизаторе.
Виды укладки биксов:
а)
универсальная –
в стерилизационную коробку укладывают материал для накрытия «стерильного стола»; б)
целевая укладка –
в стерилизационную коробку укладывают белье и перевязочный материал, необходимый для определенной операции; в)
видовая укладка –
в стерилизационную коробку кладут только один вид изделия (операционное белье или перевязочный материал и др.).
Правила упаковки материала в стерилизационные коробки:
стерилизационные коробки протираются изнутри ветошью с дезраствором; удаляются использованные индикаторы стерилизации; определяется вид укладки: видовой, целевой, универсальный; стерилизационные коробки без фильтров выстилаются пеленкой, биксы с фильтрами пеленкой можно не выстилать, если фильтры меняются через 30 циклов стерилизации; изделия, укладываемые в стерилизационные должны занимать не более 2\3 объема коробки; располагаются изделия параллельно движущемуся пару, рыхло, послойно и секторально; закладываются новые индикаторы стерилизации от 1 до 3-х в зависимости от объема стерилизационной коробки. Наиболее ответственным моментом организации работы ЦСО является сохранение стерильности медицинских изделий при разгрузке из стерилизаторов, комплектовании их в стерильной зоне, при транспортировке и использовании в клинических отделениях. Простерилизованные изделия должны оставаться в автоклаве в течение 1,5 –2 часа до полного остывания. Во время остывания не должно быть сквозняков в помещении и доступа холодного воздуха. ЦСО должна быть оборудована приточно-вытяжной вентиляцией. При разгрузке
стерилизатора исключается присутствие других сотрудников ЦСО, кроме персонала стерильной зоны. После стерилизации стерилизационные коробки выдаются в отделения только остывшими в 2- х мешках, один из которых снимается перед входом в кабинет.
Воздушный метод стерилизации сухим горячим воздухом
При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух, стерилизацию осуществляют в воздушных стерилизаторах. Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из коррозионнонестойких металлов, шприцы с пометкой 200°С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины. Сухим жаром стерилизуют некоторые термостойкие порошки, масла, тальк, стеклянную тару (ампулы, флаконы и необходимую посуду), вспомогательные материалы. Стерилизации подвергаются сухие изделия. Режимы стерилизации: 1. 180°С, 60 минут 2. 160°С, 150 минут Качество стерилизации воздушным методом зависит от равномерности распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию. Изделия выкладывают на перфорированные решетки, располагая их в один слой, не соприкасаясь друг с другом, занимая до 70% площади решетки. Крупные изделия стерилизуют на верхних полках. Стерилизаторы нельзя открывать во время процесса стерилизации, так как температура резко падает, и могут образоваться воздушные карманы с разницей температур в 30-40°С.
Виды упаковки и сроки сохранения стерильности:
Изделия, стерилизуемые в открытом виде без упаковки , помещаются на рабочий стол и используются в течение одной рабочей смены. Если же предметы простерилизованы в крафт-бумаге, они сохраняют стерильность до трех суток. Стерильность изделий, простерилизованных в бумаге влагопрочной, бумаге высокопрочной, бумаге крепированной, сохраняется до 20 суток.
Для контроля воздушной стерилизации
применяют термовременные ленты фирмы «Винар» – ИС-180, ИС-160. Термотесты укладываются на каждую полку воздушного стерилизатора в виде конверта в пяти точках по четырем краям и в середине. Если хотя бы один химический тест не изменил цвет, стерилизацию всей партии инструментов проводят заново. Работа стерилизаторов отражается в журнале контроля работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава).
Правила укладки изделий медицинского назначения в крафт-пакет.
Одним из обязательных условий эффективной стерилизации является правильная укладка изделий перед проведением стерилизации, выбор оптимальных защитных упаковок. Рациональная упаковка и укладка бельевых, инструментальных и других наборов способствуют полному удалению воздуха из стерилизуемого материала и проникновению стерилизующего агента в самые глубокие точки упаковок. Максимальное удаление воздуха из камеры и упаковок приводит к тому, что в любом участке стерилизуемых изделий достигается требуемая для стерилизации температура. В один крафт-пакет укладывается один инструмент! Стеклянные многоразовые шприцы упаковываются в разобранном состоянии, поршень вынимается из канала шприца, рядом помещаются две иглы: одна – для набора лекарственного средства, другая – для выполнения инъекции.
Размер пакетов подбирается таким образом, чтобы между материалом и краем с термошвом оставался промежуток не менее 3см. Это необходимо сделать, чтобы пакет был закрыт без образования складок, а также во избежание повреждений упаковки. Заполнение пакетов материалом должно проводиться таким образом, чтобы материал занимал не более ¾ возможного объема, чтобы нижние, боковые и верхние швы не были напряжены. Перед запечатыванием пакетов из них ладонью руки необходимо выдавить воздух, чтобы избежать чрезмерно высокого давления и разрыва запечатанных швов. Пакеты должны сохранять герметичность и сравнительно легко подвергаться утилизации.
Инфракрасный метод стерилизации
Метод основан на применении нового термического агента – кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере стерилизатора температуру 200+3°С. Полный цикл стерилизации стоматологических и микрохирургических инструментов в неупакованном виде занимает в инфракрасном стерилизаторе от 10 до 25 минут (в зависимости от инструментов), включая этапы выхода на режим и охлаждение, после чего инструменты могут использоваться по назначению. Конструкция этих стерилизаторов позволяет целиком размещать в стерилизационной камере и стерилизовать и затем оставлять для охлаждения даже стоматологические щипцы.
Гласперленовый метод стерилизации
В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). Изделия стерилизуют в неупакованном виде по режимам, указанным в инструкции по эксплуатации конкретного стерилизатора, разрешённого для применения. После стерилизации инструменты используют сразу по назначению.
Радиационный метод стерилизации
Внедрение в медицинскую практику большого количества изделий из термолабильных материалов потребовало применения так называемых «холодных» методов стерилизации, одним из которых является радиационный метод. Источником ионизирующих излучений служат долгоживущие изотопы кобальта и цезия. Радиационная стерилизация, ставшая одним из основных методов стерилизации термолабильных изделий медицинского назначения, обладает рядом технологических преимуществ. Основными достоинствами этого метода являются: высокая степень инъактивации (потеря своей активности) микроорганизмов, возможность стерилизации больших партий материалов, автоматизация процесса, стерилизация изделий в любой герметичной упаковке и товарной таре. Радиационный метод используется для промышленной стерилизации одноразовых изделий из полимерных материалов: шприцы, инъекционные иглы, катетеры, системы для переливания крови, режущих инструментов, шовных материалов, перевязочных материалов, ряда лекарственных препаратов и т.д. В лечебно-профилактических организациях радиационная стерилизация не применяется в связи с большой дороговизной и по соображениям техники безопасности. Однако в последние годы изучаются возможности создания оборудования с использованием ускоренных электронов для стерилизации изделий медицинского назначения в ЛПО.
Химический метод стерилизации
Разработка химических методов стерилизации изделий медицинского назначения во многом обязана широкому внедрению в медицинскую практику эндоскопического оборудования, разнородные материалы которого не выдерживают высоких температур. Химическая стерилизация подразделяется на стерилизацию растворами (веществами) и стерилизацию газами (газовая стерилизация), а также плазменную стерилизацию.
Газовая стерилизация
В настоящее время для газовой стерилизации используются химические соединения, обладающие спороцидным действием, среди них окись этилена, бромистый метил, смесь окиси этилена и бромистого метила (смесь ОБ в соотношении 1:2,5) и формальдегид.
При стерилизации газами необходимо на строго определенном уровне поддерживать температуру, влажность, концентрацию газа, давление и экспозицию. Это возможно только при наличии оборудования с автоматизированным прохождением цикла. Спороцидное действие газа зависит от числа и вида микроорганизмов, оставшихся на поверхности изделий после предстерилизационной обработки. Микробные клетки, оставшиеся на поверхности объекта, уничтожаются сравнительно быстро. В случаях, когда микробные клетки находятся в слое белковых загрязнений, эффективность стерилизации будет сомнительной, так как клетки, не контактирующие с газом, могут сохранить жизнедеятельность. Отсюда совершенно очевидно, что все медицинские изделия перед проведением газовой стерилизации должны подвергаться тщательной предстерилизационной очистке.
Плазменная стерилизация
Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная стерилизация в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS (рис.80). Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20 %-ный пероксид водорода. Пероксид водорода и плазма имеют большое преимущество – распадаются на нетоксичные продукты – воду и кислород, не оказывая вредного воздействия на окружающую среду. Такая технология отличается максимально щадящим воздействием на конструкционные материалы медицинских изделий, что дает уникальные возможности для многократной стерилизации изделий, содержащих высококачественную оптику, электронику, а также изделий со специальными покрытиями или красками. Стерилизация проводится в сухой атмосфере при температуре 36°С – 50°С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности. Данный метод стерилизации применяют как альтернативу низкотемпературной газовой стерилизации окисью этилена и стерилизации в парах формальдегида. Использование окиси этилена все более и более ограничивают из-за высокой токсичности стерилизующего агента и необходимости последующей длительной вентиляции стерилизованных изделий.
Химическая стерилизация растворами – жидкостный метод
Стерилизация проводится растворами химических веществ путем полного погружения изделия в раствор на время стерилизационной выдержки, после чего изделие должно быть промыто стерильной водой. Химический метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы (эндоскопы, лапароскопы, гистероскопы и др.). Конструкция изделия должна позволять стерилизовать его растворами химических средств. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и промывной жидкости ко всем стерилизуемым поверхностям изделия. При стерилизации растворами химических средств используют стерильные ёмкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений). Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна составлять не менее 20°С для альдегидсодержащих средств и не менее 18°С – для остальных средств. Современные химические стерилянты и режимы стерилизации Стерилянт Экспозиционная выдержка Температура раствора Перекись водорода 6% 6 часов 3 часа 18ºС 50ºС Дезоксон 1-1% 45 минут 18ºС Глутарал 2% 4-10 часов 18ºС Сайдекс 15 минут 20°С
Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъёмные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими. Стерильные изделия промываются после перекиси водорода в двух водах по 5 минут. Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают (с помощью стерильных пинцетов, корнцангов) на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток. Высокий риск реконтаминации, а также дороговизна стерилянтов позволяет использовать данный метод только для стерилизации медицинских изделий, сложных в своей конструкции.
Контроль качества стерилизации
Качество и эффективность стерилизации зависят от многих факторов, один из них – контроль стерилизации. В соответствии с инструктивно-методическими документами Минздрава РФ, для получения объективной оценки качества стерилизации ее контроль должен проводиться комплексно:
Физическими методами
– с помощью контрольно-измерительной аппаратуры. - Предусматривает контроль параметров работы стерилизационного оборудования (таймерами, датчиками температуры, давления и относительной влажности и др.). - Проводится оператором, обслуживающим стерилизационное оборудование. - Должен проводиться ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации. - Позволяет оперативно выявить и устранить отклонения в работе стерилизационного оборудования. Недостаток. Оценивает действие параметров внутри камеры аппарата, а не внутри стерилизуемых упаковок и поэтому должен использоваться в комплексе с другими методами контроля.
Химическими методами
– с помощью химических индикаторов (термотесты фирмы «Винар» и др.). - Необходим для оперативного контроля нескольких действующих параметров стерилизационного цикла. - Должен проводиться ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации. - Проводится с использованием химических индикаторов. - Принцип действия химических индикаторов основан на изменении состояния индикаторного вещества или (и) цвета индикаторной краски при действии определенных параметров стерилизации, строго специфичных для каждого типа индикаторов, в зависимости от метода и режима стерилизации. По принципу размещения индикаторов на стерилизуемых объектах различают два типа химических индикаторов: наружные и внутренние: - Наружные индикаторы (ленты, наклейки) крепятся липким слоем на поверхности используемых упаковок (бумага, металл, стекло и т.д.) и удаляются впоследствии. Наружным индикатором могут являться также некоторые упаковочные материалы (например, бумажно-пластиковые мешки, рулоны), содержащие химический индикатор на своей поверхности. - Внутренние индикаторы размещаются внутри упаковки со стерилизуемыми материалами вне зависимости от ее вида (бумажный пакет или металлический контейнер и др.). К ним относятся различные виды бумажных индикаторных полосок, содержащие на своей поверхности индикаторную краску. О применении химических термотестов для контроля физической стерилизации (воздушным и паровым методом) говорилось выше.
Биологическими методами:
1) Основан на гибели споровых форм тест-культур, специфичных для каждого из используемых методов стерилизации (Bas. subtilis, Bac. stearothermophilus). Предназначен для оценки состояния стерильности изделий и материалов. Биологические индикаторы могут быть изготовлены в лабораторных условиях.
2) Посев простерилизованного материала на стерильность и забор смывов на стерильность. Биологический метод подтверждает эффективность выбранного режима стерилизации.
Документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации.
Приказ МЗ СССР от 10.06.1985 г. № 770 «О введении в действие отраслевого стандарта
ОСТ 42-21-2-85
«Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы». Постановление Главного государственного санитарного врача РФ от 18.05.2010 г. № 58 «Санитарно-эпидемические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»
СанПиН 2.1.3.2630-10.
МУ 287-113
Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения. Приказ Комитета по здравоохранению Администрации Волгоградской обл .,
№
851/1-243
от
26.09.2000г. Об утверждении методических рекомендаций по дезинфекционно-стерилизационному режиму в медицинских учреждениях области. Приложение 2
Контрольно-оценочные средства для текущего контроля знаний студентов
по теме
:
«Предстерилизационная очистка»
Задание 1. Внести информацию
Перечислить основные этапы проведения предстерилизационной очистки ручным методом. 1._______________ 2._______________ 3._______________ 4._______________ 5._______________
Задание 2. Заполните таблицу «Приготовление моющих растворов»
№
п\п
Состав моющего раствора
Количество
Время
Температура
1. 1. Моющее средство «Биолот» 2. Вода питьевая
2. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос» 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 3% 3. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 5 % 4. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 6 % 5. 1. Сода пищевая 2. Вода питьевая
Эталоны ответов
Задание 1. Внести информацию
Перечислить основные этапы проведения предстерилизационной очистки ручным методом:
1. погружение в моющий раствор 2. промывание в моющем растворе каждое изделие 3. промывание под проточной водой 4. ополаскивание в дистиллированной воде 5. высушивание в сухожаровом шкафу или в открытом виде до полного высыхания.
Задание 2. Заполните таблицу «Приготовление моющих растворов
№
п\п
Состав моющего раствора
Количество
( на 1 литр
раствора)
Время
(в минутах)
Температура
(в градусах
Цельсия)
1. 1. Моющее средство «Биолот» 2. Вода питьевая 5 гр 995 мл 15 40- 45 2. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос» 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 3% 5 гр 825 мл 170 мл 15 50-55 3. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 5 % 5 гр 895 мл 100 мл 15 50-55
4. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 6 % 5 гр 910 мл 85 мл 15 50-55 5. 1. Сода пищевая 2. Вода питьевая 20 гр 980 мл 15 100
Критерии оценки работ студентов
Внести информацию
«5»
- информация внесена верно на 100%
«4»
- информация внесена не полностью на 90%, или с небольшими недочетами
«3»
- информация внесена на 70-80%,
«2»
- информация внесена менее чем на 70%, или внесена неверная информация
Заполните таблицу
«5»
- таблица заполнена на 100% (информация внесена полностью, верная)
«4»
- таблица заполнена на 90% (или информация внесена с недочетами)
«3»
- таблица заполнена не полностью, соответствует эталону на 70-80%
«2»
- таблица заполнена менее чем на 70%
МЕТОДИЧЕСКАЯ РАЗРАБОТКА
КОМБИНИРОВАННОГО ЗАНЯТИЯ
Тема: Стерилизация
Междисциплинарный курс:
Безопасная среда для участников лечебно-
диагностического процесса
Курс:
Специальность:
Форма обучения:
I, II 31.02.01 Лечебное дело; 34.02.01 Сестринское дело; 31.02.02 Акушерское дело. очная
Количество часов:
2
Разработчик:
Т.В. Якименко, преподаватель высшей квалификационной категории Методическая разработка рассмотрена и одобрена на заседании УМО № 5 протокол № __ , от "___"__________ 2016г. Председатель УМО № __________Л.В. Борисова "___"_____________2016г. Волжский 2016
1. Мотивация изучения темы:
Любые предметы, применяемые при лечении и уходе за пациентами, если они не будут полностью обеззаражены, могут привести к инфицированию других людей. Использование недостаточно простерилизованного инструментария может вызвать развитие парентерального гепатита, СПИДа, стафилококковой и других инфекций. Медицинская сестра должна знать виды, методы и режимы стерилизации. Осуществлять стерилизацию согласно действующим нормативным документам.
Цели занятия:
Для преподавателя:
формирование у студентов общих и профессиональных компетенций; формирование умений и навыков самостоятельного умственного труда; развитие самостоятельности мышления, способности к самоорганизации; развитие творческих способностей, познавательного интереса, повышения активности обучающихся; мотивирование регулярной целенаправленной работы по освоению специальности.
Учебные:
Знать:
Направленность умений и знаний на формирование ПК и ОК
№ п/ п Знания ПК ОК 1 З.1. Понятие «стерилизация»; Виды, методы, средства и режимы стерилизации; ПК 4.7.; ПК 5.7., ПК 7.7. Обеспечивать инфекционную безопасность. ПК 4.8.; ПК 5.8., ПК 7.8. Обеспечивать безопасную больничную среду для пациентов и персонала. ОК 2. Организовывать собственную деятельность, исходя из цели и способов её достижения, определенных руководителем. ОК 3. Анализировать рабочую ситуацию, осуществлять текущий и итоговый контроль, оценку и коррекцию собственной деятельности, нести ответственность за результаты своей работы. ОК 4. Осуществлять поиск информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач. ОК 8. Соблюдать правила охраны труда, пожарной безопасности и техники безопасности. 2 З.2. Виды контроля режима и качества паровой и воздушной стерилизации; ПК 4.7.; ПК 5.7., ПК 7.7. Обеспечивать инфекционную безопасность. ПК 4.8.; ПК 5.8., ПК 7.8. Обеспечивать безопасную больничную среду для ОК 2. Организовывать собственную деятельность, исходя из цели и способов её достижения, определенных руководителем. ОК 3. Анализировать
пациентов и персонала. рабочую ситуацию, осуществлять текущий и итоговый контроль, оценку и коррекцию собственной деятельности, нести ответственность за результаты своей работы. ОК 4. Осуществлять поиск информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач. ОК 8. Соблюдать правила охраны труда, пожарной безопасности и техники безопасности. 3 З.3. Документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации. ПК 4.7.; ПК 5.7., ПК 7.7. Обеспечивать инфекционную безопасность. ПК 4.8.; ПК 5.8., ПК 7.8. Обеспечивать безопасную больничную среду для пациентов и персонала. ОК 2. Организовывать собственную деятельность, исходя из цели и способов её достижения, определенных руководителем. ОК 4. Осуществлять поиск информации, необходимой для эффективного выполнения профессиональных задач.
Воспитательные:
формирование стремления добиваться высоких результатов в работе; воспитание стремления к рациональному сочетанию труда и отдыха; способствовать формированию интереса к профессиональной деятельности, путем реализации внутри и междисциплинарных связей, мотивации изучения темы для решения дальнейших практических задач;
Развивающие:
развитие привычек учебного труда: готовность к занятию, организованность; способствовать развитию логического и клинического мышления; способствовать развитию умения работать самостоятельно; способствовать актуализации прежних знаний.
Интеграционные связи:
Внутримодудьные:
МДК. 04.01. Безопасная среда для участников лечебно-диагностического процесса. Тема 1.1.Основы организации работы младшей медицинской сестры по уходу за больными. Тема 1.2. Инфекционный контроль и профилактика ВБИ . Тема 1.3. Дезинфекция. Тема 1.4. Предстерилизационная очистка.
Межмодульные,
связь с учебными дисциплинами: Основы микробиологии и иммунологии, гигиена и экология человека. МДК.01.03 Сестринское дело в системе первичной медико-санитарной помощи населению.
Оснащение:
доска, мел, методическая разработка комбинированного занятия, КОСы по теме, дидактический материал .
Основные этапы занятия:
1. организационный момент - 5 минут; 2. проверка теоретических знаний - 25 минут; 3. объяснение нового материала – 45 минут; 4. закрепление нового материала – 5 минут; 5. подведение итогов занятия – 5 минут; 6. задание на дом – 5 минут.
Список литературы:
Основные источники:
1. Кулешова, Л. Основы сестринского дела : теория и практика [Текст]. В 2 ч. Ч. 1 : учебник / Л. И. Кулешова, Е. В. Пустоветова. – Ростов н/Д. : Феникс, 2008. – 477 , [1] с. : ил. – (Медицина). 2. Кулешова, Л. Основы сестринского дела : теория и практика [Текст]. В 2 ч. Ч. 2 : учебник / Л. И. Кулешова, Е. В. Пустоветова. – Ростов н/Д. : Феникс, 2008. – 320 , [2] с. : ил. – (Медицина). 3. Мухина, С. Практическое руководство к предмету «Основы сестринского дела» [Текст] / Светлана Мухина, Изабелла Тарновская. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2013. - 512с. 4. Обуховец, Т.П. Основы сестринского дела Практикум [Текст] / Тамара Обуховец. - Ростов н/д. : Феникс, 2014. - 530 с.(Медицина для Вас). 5. Обуховец, Т.П. Основы сестринского дела [Текст] : учеб. / Т.П. Обуховец, Т.А. Склярова, О.В. Чернова. - Ростов н/д. : Феникс, 2005. - 512с.
Дополнительные источники:
1. Основы сестринского дела : справочник /М.Ю. Алешкина, Н. А. Гуськова, О. П. Иванова, С. В. Науменко, А.М. Спринц, И. Н. Филиппова, Е. П. Шатова, З. М. Юдакова ; под ред. А. М. Спринца. - СПб. : СпецЛит, 2009. - 463 с. 2. Организация сестринской деятельности : учебник / под ред. С. И. Двойникова. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2014. - 528 с. 3. Практическое руководство к предмету "Основы сестринского дела" : учеб. пос. - 2-е изд., испр. и доп. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2014. - 512 с. : ил. 4. Руководство для средних медицинских работиков / Под ред. Ю.П. Никитина, В.М. Чернышева. - М. : ГЭОТАР-Медиа, 2007. - 992 c. 5. Щербакова, Т.С. Сестринское дело [Текст]: справочник / Т.С. Щербакова . Ростов н/Д. : Феникс, 2008. – 253
Ход занятия
№ п/п Название этапа Описание этапа Педагогическая цель этапа Время этапа, минуты 1 2 3 4 5 1. Организацион ный момент Отмечается внешний вид студентов и аудитории; проводится инструктаж по охране труда; сообщается тема, цели занятия Создание рабочей атмосферы, формирование профессиональной мотивации к 5
проводится мотивация темы занятия; сообщается и записывается план лекции (Приложение 1). изучению данной темы. 2. Проверка теоретических знаний
а) Проверка знаний
(по предыдущей теме: « Предстерилизационная очистка»)
:
- Задание 1: внести информацию - Задание 2: заполнить таблицу (Приложение 2);
б) проверка аудиторной и
внеаудиторной самостоятельной
работы
: (путем перекрестного рецензирования с последующим анализом самостоятельной работы);
в) подведение итогов контроля
: Преподаватель обращает внимание на допущенные ошибки, вносит коррективы в ответы, отмечает лучших студентов и дает рекомендации, пояснения тем, кто допустил ошибки. Определение уровня усвоения изучаемого материала, выявление слабых мест, устранение ошибок. 25 3. Объяснение нового материала
а) Вступительная часть лекции:
логическая подготовка студентов к восприятию теоретического материала лекции. Формирование познавательного интереса к содержанию учебного материала. 3
б) Основная часть лекции
(преподаватель использует словесный метод)
:
изложение теоретической информации по вопросам лекции: - Виды, методы, средства и режимы стерилизации; - Виды контроля режима и качества паровой и воздушной стерилизации; - Документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации. Изложение и объяснение научной информации, подлежащей осмыслению и запоминанию. Формирование ОК и ПК. 40
в) Заключительная часть
лекции:
логическое обобщение полученной научной информации. Обобщение полученной теоретической информации. 2
4. Закрепление материала По ходу лекции в форме беседы с ответами на вопросы: - Дайте определения понятию: стерилизация ; - Назовите виды стерилизации; - Назовите методы физической стерилизации; - Назовите методы химической стерилизации; - Перечислите виды контроля качества стерилизации; - Перечислите нормативные документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации; Осмысление нового теоретического материала, устранение возникших ошибок при восприятии информации. Определение уровня усвоения изучаемого материала, выявление слабых мест . 5 5. Подведение итогов занятия Преподаватель кратко анализирует занятие и дает критическую оценку каждого его этапа, обращает внимание на хорошие результаты и на допущенные ошибки. Побуждение студентов к рефлексии, стимулирование интереса к учебе и ее результатам. 5 6. Задание на дом - Выучить конспект лекции. (Приложение 1). - Составить графо-логическую структуру «Виды, методы и режимы стерилизации». Активизация самостоятельной работы студентов. Обеспечение добросовестного и осознанного выполнения домашнего задания. 5
Приложение 1
Лекция № 8
Тема: Стерилизация
Стерилизация –
освобождение какого-либо предмета или материала от всех видов микроорганизмов (включая бактерии и их споры, грибы, вирусы и прионы), либо их уничтожение. Любые предметы, применяемые при лечении и уходе за пациентами, если они не будут полностью обеззаражены, могут привести к инфицированию других людей. Использование недостаточно простерилизованного инструментария может вызвать развитие парентерального гепатита, СПИДа, стафилококковой и других инфекций. Стерилизации подвергаются все инструменты, средней и высокой степени риска инфицирования: изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами и медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать её повреждение. Стерилизацию проводят после предстерилизационной очистки с отрицательными результатами проб на следы крови (азопирамовая) и щелочных компонентов синтетических моющих средств (фенолфталеиновая проба).
Виды, методы и режимы стерилизации
(см. таблицу)
Виды
стерилизации
Методы
стерилизации
Действующий агент, режим
Физический паровой воздушный гласперленовый инфракрасный радиационный пар под избыточным давлением (120 °С, давление 1,1 атм. – 45 минут) (132 °С, давление 2,0 атм. – 20 минут) сухой воздух (при 180 °С – 60 минут) (160°С – 150 минут) нагретые стеклянные шарики при 190–240 °С инфракрасное излучение при 200+3 °С облучение ионизирующим излучением Химический жидкостный плазменный газовый растворы химических соединений (альдегид-, кислород- содержащих и др.) пары 20 % пероксида водорода окись этилена в смеси с углекислым газом, бромистым метилом и др.
Паровой метод стерилизации
Для проведения паровой стерилизации используют паровые стерилизаторы (автоклавы). Стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением. Паровым методом стерилизуют общие хирургические и специальные инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое белье, перевязочный и шовный материал, изделия из резин (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных видов пластмасс. Режимы стерилизации:
1. 132ºС, 2 атм., 20 минут (основной режим, рекомендуется для изделий из коррозионно-стойкого металла, стекла, изделий из текстиля, резины). 2. 120ºС, 1,1 атм., 45 минут (щадящий режим, рекомендуется для изделий из резины, латекса и отдельных полимерных материалов). В целях уменьшения неблагоприятного воздействия пара резиновые перчатки, как и другие изделия из резин, стерилизуют при температуре 120°С.
Виды упаковки и сроки сохранения стерильности:
При стерилизации паровым методом материал упаковывают в стерилизационные коробки с фильтром или без фильтра, двойную мягкую упаковку из бязи, пергамент, крафт-бумагу, бумагу влагопрочную, бумагу высокопрочную, бумагу крепированную. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в стерилизационной коробке без фильтра, в двойной мягкой упаковке, крафт-бумаге – 3 суток, в пергаменте, бумаге влагопрочной, бумаге высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром – 20 суток. В современных упаковках и более 20 суток. При открытой стерилизационной коробке любого образца стерильность материалов, изделий сохраняется до 24 часов.
Сроки использования изделий
контролируются проставляемыми на бирках стерилизационных коробок датами, временем стерилизации, датами и временем вскрытия (первые помечаются работниками ЦСО или автоклавной, вторые выполняются медицинскими сестрами отделений).
Для контроля паровой стерилизации
применяют термовременные ленты фирмы «Винар» – ИС-132, ИС-120. Это современные тесты контроля стерилизации, представляющие собой бумажные полоски с нанесенными на одну сторону специальным индикаторным составом, который меняет цвет при заданном режиме стерилизации (температуре и времени) и подтверждает наличие пара в стерилизаторе.
Виды укладки биксов:
а)
универсальная –
в стерилизационную коробку укладывают материал для накрытия «стерильного стола»; б)
целевая укладка –
в стерилизационную коробку укладывают белье и перевязочный материал, необходимый для определенной операции; в)
видовая укладка –
в стерилизационную коробку кладут только один вид изделия (операционное белье или перевязочный материал и др.).
Правила упаковки материала в стерилизационные коробки:
стерилизационные коробки протираются изнутри ветошью с дезраствором; удаляются использованные индикаторы стерилизации; определяется вид укладки: видовой, целевой, универсальный; стерилизационные коробки без фильтров выстилаются пеленкой, биксы с фильтрами пеленкой можно не выстилать, если фильтры меняются через 30 циклов стерилизации; изделия, укладываемые в стерилизационные должны занимать не более 2\3 объема коробки; располагаются изделия параллельно движущемуся пару, рыхло, послойно и секторально; закладываются новые индикаторы стерилизации от 1 до 3-х в зависимости от объема стерилизационной коробки. Наиболее ответственным моментом организации работы ЦСО является сохранение стерильности медицинских изделий при разгрузке из стерилизаторов, комплектовании их в стерильной зоне, при транспортировке и использовании в клинических отделениях. Простерилизованные изделия должны оставаться в автоклаве в течение 1,5 –2 часа до полного остывания. Во время остывания не должно быть сквозняков в помещении и доступа холодного воздуха. ЦСО должна быть оборудована приточно-вытяжной вентиляцией. При разгрузке
стерилизатора исключается присутствие других сотрудников ЦСО, кроме персонала стерильной зоны. После стерилизации стерилизационные коробки выдаются в отделения только остывшими в 2- х мешках, один из которых снимается перед входом в кабинет.
Воздушный метод стерилизации сухим горячим воздухом
При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух, стерилизацию осуществляют в воздушных стерилизаторах. Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, в том числе изготовленные из коррозионнонестойких металлов, шприцы с пометкой 200°С, инъекционные иглы, изделия из силиконовой резины. Сухим жаром стерилизуют некоторые термостойкие порошки, масла, тальк, стеклянную тару (ампулы, флаконы и необходимую посуду), вспомогательные материалы. Стерилизации подвергаются сухие изделия. Режимы стерилизации: 1. 180°С, 60 минут 2. 160°С, 150 минут Качество стерилизации воздушным методом зависит от равномерности распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия загружают в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому изделию. Изделия выкладывают на перфорированные решетки, располагая их в один слой, не соприкасаясь друг с другом, занимая до 70% площади решетки. Крупные изделия стерилизуют на верхних полках. Стерилизаторы нельзя открывать во время процесса стерилизации, так как температура резко падает, и могут образоваться воздушные карманы с разницей температур в 30-40°С.
Виды упаковки и сроки сохранения стерильности:
Изделия, стерилизуемые в открытом виде без упаковки , помещаются на рабочий стол и используются в течение одной рабочей смены. Если же предметы простерилизованы в крафт-бумаге, они сохраняют стерильность до трех суток. Стерильность изделий, простерилизованных в бумаге влагопрочной, бумаге высокопрочной, бумаге крепированной, сохраняется до 20 суток.
Для контроля воздушной стерилизации
применяют термовременные ленты фирмы «Винар» – ИС-180, ИС-160. Термотесты укладываются на каждую полку воздушного стерилизатора в виде конверта в пяти точках по четырем краям и в середине. Если хотя бы один химический тест не изменил цвет, стерилизацию всей партии инструментов проводят заново. Работа стерилизаторов отражается в журнале контроля работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава).
Правила укладки изделий медицинского назначения в крафт-пакет.
Одним из обязательных условий эффективной стерилизации является правильная укладка изделий перед проведением стерилизации, выбор оптимальных защитных упаковок. Рациональная упаковка и укладка бельевых, инструментальных и других наборов способствуют полному удалению воздуха из стерилизуемого материала и проникновению стерилизующего агента в самые глубокие точки упаковок. Максимальное удаление воздуха из камеры и упаковок приводит к тому, что в любом участке стерилизуемых изделий достигается требуемая для стерилизации температура. В один крафт-пакет укладывается один инструмент! Стеклянные многоразовые шприцы упаковываются в разобранном состоянии, поршень вынимается из канала шприца, рядом помещаются две иглы: одна – для набора лекарственного средства, другая – для выполнения инъекции.
Размер пакетов подбирается таким образом, чтобы между материалом и краем с термошвом оставался промежуток не менее 3см. Это необходимо сделать, чтобы пакет был закрыт без образования складок, а также во избежание повреждений упаковки. Заполнение пакетов материалом должно проводиться таким образом, чтобы материал занимал не более ¾ возможного объема, чтобы нижние, боковые и верхние швы не были напряжены. Перед запечатыванием пакетов из них ладонью руки необходимо выдавить воздух, чтобы избежать чрезмерно высокого давления и разрыва запечатанных швов. Пакеты должны сохранять герметичность и сравнительно легко подвергаться утилизации.
Инфракрасный метод стерилизации
Метод основан на применении нового термического агента – кратковременного импульсного инфракрасного излучения, создающего в рабочей камере стерилизатора температуру 200+3°С. Полный цикл стерилизации стоматологических и микрохирургических инструментов в неупакованном виде занимает в инфракрасном стерилизаторе от 10 до 25 минут (в зависимости от инструментов), включая этапы выхода на режим и охлаждение, после чего инструменты могут использоваться по назначению. Конструкция этих стерилизаторов позволяет целиком размещать в стерилизационной камере и стерилизовать и затем оставлять для охлаждения даже стоматологические щипцы.
Гласперленовый метод стерилизации
В стерилизаторах, стерилизующим средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделия, применяемые в стоматологии (боры зубные, головки алмазные, дрильборы, а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зондов и др.). Изделия стерилизуют в неупакованном виде по режимам, указанным в инструкции по эксплуатации конкретного стерилизатора, разрешённого для применения. После стерилизации инструменты используют сразу по назначению.
Радиационный метод стерилизации
Внедрение в медицинскую практику большого количества изделий из термолабильных материалов потребовало применения так называемых «холодных» методов стерилизации, одним из которых является радиационный метод. Источником ионизирующих излучений служат долгоживущие изотопы кобальта и цезия. Радиационная стерилизация, ставшая одним из основных методов стерилизации термолабильных изделий медицинского назначения, обладает рядом технологических преимуществ. Основными достоинствами этого метода являются: высокая степень инъактивации (потеря своей активности) микроорганизмов, возможность стерилизации больших партий материалов, автоматизация процесса, стерилизация изделий в любой герметичной упаковке и товарной таре. Радиационный метод используется для промышленной стерилизации одноразовых изделий из полимерных материалов: шприцы, инъекционные иглы, катетеры, системы для переливания крови, режущих инструментов, шовных материалов, перевязочных материалов, ряда лекарственных препаратов и т.д. В лечебно-профилактических организациях радиационная стерилизация не применяется в связи с большой дороговизной и по соображениям техники безопасности. Однако в последние годы изучаются возможности создания оборудования с использованием ускоренных электронов для стерилизации изделий медицинского назначения в ЛПО.
Химический метод стерилизации
Разработка химических методов стерилизации изделий медицинского назначения во многом обязана широкому внедрению в медицинскую практику эндоскопического оборудования, разнородные материалы которого не выдерживают высоких температур. Химическая стерилизация подразделяется на стерилизацию растворами (веществами) и стерилизацию газами (газовая стерилизация), а также плазменную стерилизацию.
Газовая стерилизация
В настоящее время для газовой стерилизации используются химические соединения, обладающие спороцидным действием, среди них окись этилена, бромистый метил, смесь окиси этилена и бромистого метила (смесь ОБ в соотношении 1:2,5) и формальдегид.
При стерилизации газами необходимо на строго определенном уровне поддерживать температуру, влажность, концентрацию газа, давление и экспозицию. Это возможно только при наличии оборудования с автоматизированным прохождением цикла. Спороцидное действие газа зависит от числа и вида микроорганизмов, оставшихся на поверхности изделий после предстерилизационной обработки. Микробные клетки, оставшиеся на поверхности объекта, уничтожаются сравнительно быстро. В случаях, когда микробные клетки находятся в слое белковых загрязнений, эффективность стерилизации будет сомнительной, так как клетки, не контактирующие с газом, могут сохранить жизнедеятельность. Отсюда совершенно очевидно, что все медицинские изделия перед проведением газовой стерилизации должны подвергаться тщательной предстерилизационной очистке.
Плазменная стерилизация
Существует современный, эффективный, но весьма дорогой метод стерилизации – плазменная стерилизация в низкотемпературных плазменных стерилизаторах SPS (рис.80). Принцип работы этой аппаратуры основан на генерации плазмы непосредственно вокруг стерилизуемого материала. Стерилизующим агентом является 20 %-ный пероксид водорода. Пероксид водорода и плазма имеют большое преимущество – распадаются на нетоксичные продукты – воду и кислород, не оказывая вредного воздействия на окружающую среду. Такая технология отличается максимально щадящим воздействием на конструкционные материалы медицинских изделий, что дает уникальные возможности для многократной стерилизации изделий, содержащих высококачественную оптику, электронику, а также изделий со специальными покрытиями или красками. Стерилизация проводится в сухой атмосфере при температуре 36°С – 50°С, что гарантирует сохранность инструментов и оборудования, чувствительного к повышенной температуре и влажности. Данный метод стерилизации применяют как альтернативу низкотемпературной газовой стерилизации окисью этилена и стерилизации в парах формальдегида. Использование окиси этилена все более и более ограничивают из-за высокой токсичности стерилизующего агента и необходимости последующей длительной вентиляции стерилизованных изделий.
Химическая стерилизация растворами – жидкостный метод
Стерилизация проводится растворами химических веществ путем полного погружения изделия в раствор на время стерилизационной выдержки, после чего изделие должно быть промыто стерильной водой. Химический метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию которых входят термолабильные материалы (эндоскопы, лапароскопы, гистероскопы и др.). Конструкция изделия должна позволять стерилизовать его растворами химических средств. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и промывной жидкости ко всем стерилизуемым поверхностям изделия. При стерилизации растворами химических средств используют стерильные ёмкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений). Температура растворов, за исключением специальных режимов применения перекиси водорода и средства Лизоформин 3000, должна составлять не менее 20°С для альдегидсодержащих средств и не менее 18°С – для остальных средств. Современные химические стерилянты и режимы стерилизации Стерилянт Экспозиционная выдержка Температура раствора Перекись водорода 6% 6 часов 3 часа 18ºС 50ºС Дезоксон 1-1% 45 минут 18ºС Глутарал 2% 4-10 часов 18ºС Сайдекс 15 минут 20°С
Стерилизацию проводят при полном погружении изделий в раствор, свободно их раскладывая. При большой длине изделия его укладывают по спирали. Разъёмные изделия стерилизуют в разобранном виде. Каналы и полости заполняют раствором. Во избежание разбавления рабочих растворов, используемых для стерилизации, погружаемые в них изделия должны быть сухими. Стерильные изделия промываются после перекиси водорода в двух водах по 5 минут. Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают (с помощью стерильных пинцетов, корнцангов) на хранение в стерильную стерилизационную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток. Высокий риск реконтаминации, а также дороговизна стерилянтов позволяет использовать данный метод только для стерилизации медицинских изделий, сложных в своей конструкции.
Контроль качества стерилизации
Качество и эффективность стерилизации зависят от многих факторов, один из них – контроль стерилизации. В соответствии с инструктивно-методическими документами Минздрава РФ, для получения объективной оценки качества стерилизации ее контроль должен проводиться комплексно:
Физическими методами
– с помощью контрольно-измерительной аппаратуры. - Предусматривает контроль параметров работы стерилизационного оборудования (таймерами, датчиками температуры, давления и относительной влажности и др.). - Проводится оператором, обслуживающим стерилизационное оборудование. - Должен проводиться ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации. - Позволяет оперативно выявить и устранить отклонения в работе стерилизационного оборудования. Недостаток. Оценивает действие параметров внутри камеры аппарата, а не внутри стерилизуемых упаковок и поэтому должен использоваться в комплексе с другими методами контроля.
Химическими методами
– с помощью химических индикаторов (термотесты фирмы «Винар» и др.). - Необходим для оперативного контроля нескольких действующих параметров стерилизационного цикла. - Должен проводиться ежедневно при проведении каждого цикла стерилизации. - Проводится с использованием химических индикаторов. - Принцип действия химических индикаторов основан на изменении состояния индикаторного вещества или (и) цвета индикаторной краски при действии определенных параметров стерилизации, строго специфичных для каждого типа индикаторов, в зависимости от метода и режима стерилизации. По принципу размещения индикаторов на стерилизуемых объектах различают два типа химических индикаторов: наружные и внутренние: - Наружные индикаторы (ленты, наклейки) крепятся липким слоем на поверхности используемых упаковок (бумага, металл, стекло и т.д.) и удаляются впоследствии. Наружным индикатором могут являться также некоторые упаковочные материалы (например, бумажно-пластиковые мешки, рулоны), содержащие химический индикатор на своей поверхности. - Внутренние индикаторы размещаются внутри упаковки со стерилизуемыми материалами вне зависимости от ее вида (бумажный пакет или металлический контейнер и др.). К ним относятся различные виды бумажных индикаторных полосок, содержащие на своей поверхности индикаторную краску. О применении химических термотестов для контроля физической стерилизации (воздушным и паровым методом) говорилось выше.
Биологическими методами:
1) Основан на гибели споровых форм тест-культур, специфичных для каждого из используемых методов стерилизации (Bas. subtilis, Bac. stearothermophilus). Предназначен для оценки состояния стерильности изделий и материалов. Биологические индикаторы могут быть изготовлены в лабораторных условиях.
2) Посев простерилизованного материала на стерильность и забор смывов на стерильность. Биологический метод подтверждает эффективность выбранного режима стерилизации.
Документы, регламентирующие методы, средства и режимы стерилизации.
Приказ МЗ СССР от 10.06.1985 г. № 770 «О введении в действие отраслевого стандарта
ОСТ 42-21-2-85
«Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения. Методы, средства и режимы». Постановление Главного государственного санитарного врача РФ от 18.05.2010 г. № 58 «Санитарно-эпидемические требования к организациям, осуществляющим медицинскую деятельность»
СанПиН 2.1.3.2630-10.
МУ 287-113
Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения. Приказ Комитета по здравоохранению Администрации Волгоградской обл .,
№
851/1-243
от
26.09.2000г. Об утверждении методических рекомендаций по дезинфекционно-стерилизационному режиму в медицинских учреждениях области. Приложение 2
Контрольно-оценочные средства для текущего контроля знаний студентов
по теме
:
«Предстерилизационная очистка»
Задание 1. Внести информацию
Перечислить основные этапы проведения предстерилизационной очистки ручным методом. 1._______________ 2._______________ 3._______________ 4._______________ 5._______________
Задание 2. Заполните таблицу «Приготовление моющих растворов»
№
п\п
Состав моющего раствора
Количество
Время
Температура
1. 1. Моющее средство «Биолот» 2. Вода питьевая
2. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос» 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 3% 3. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 5 % 4. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 6 % 5. 1. Сода пищевая 2. Вода питьевая
Эталоны ответов
Задание 1. Внести информацию
Перечислить основные этапы проведения предстерилизационной очистки ручным методом:
1. погружение в моющий раствор 2. промывание в моющем растворе каждое изделие 3. промывание под проточной водой 4. ополаскивание в дистиллированной воде 5. высушивание в сухожаровом шкафу или в открытом виде до полного высыхания.
Задание 2. Заполните таблицу «Приготовление моющих растворов
№
п\п
Состав моющего раствора
Количество
( на 1 литр
раствора)
Время
(в минутах)
Температура
(в градусах
Цельсия)
1. 1. Моющее средство «Биолот» 2. Вода питьевая 5 гр 995 мл 15 40- 45 2. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос» 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 3% 5 гр 825 мл 170 мл 15 50-55 3. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 5 % 5 гр 895 мл 100 мл 15 50-55
4. 1. Моющее средство «Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос». 2. Вода питьевая 3. Перекись водорода - 6 % 5 гр 910 мл 85 мл 15 50-55 5. 1. Сода пищевая 2. Вода питьевая 20 гр 980 мл 15 100
Критерии оценки работ студентов
Внести информацию
«5»
- информация внесена верно на 100%
«4»
- информация внесена не полностью на 90%, или с небольшими недочетами
«3»
- информация внесена на 70-80%,
«2»
- информация внесена менее чем на 70%, или внесена неверная информация
Заполните таблицу
«5»
- таблица заполнена на 100% (информация внесена полностью, верная)
«4»
- таблица заполнена на 90% (или информация внесена с недочетами)
«3»
- таблица заполнена не полностью, соответствует эталону на 70-80%
«2»
- таблица заполнена менее чем на 70%
В раздел среднее профессиональное образование